Complete de novo sequencing of a human immunoglobulin G using multiple enzyme digests and LC-ESI-QTOF-MS/MS analysis
Aplikace | 2020 | BrukerInstrumentace
Monoklonální protilátky představují klíčovou třídu bioterapeutik v diagnostice i terapii. Pro jejich vývoj a srovnávací studia biosimilars je nezbytné znát přesnou aminokyselinovou sekvenci celého IgG. V případech, kdy není dostupné cDNA nebo došlo ke ztrátě hybridomové buněčné linie, přijdou ke slovu analytické techniky de novo sekvenování na úrovni proteinu.
Cílem studie bylo demonstrovat kompletní de novo určení sekvence lidské monoklonální IgG1 (AF165) bez předchozích znalostí genu. Výzkum kombinoval několik proteolytických štěpení, vysoce rozlišenou LC-ESI-QTOF-MS/MS analýzu a bioinformatické sestavení sekvence v softwaru PEAKS AB 2.0. Klíčovým ukazatelem úspěchu bylo dosažení 100% pokrytí obou lehkého i těžkého řetězce včetně CDR oblastí.
Vzorek: 30 µg rekombinantní lidské IgG1
Kombinací šesti enzymatických štěpení bylo získáno dostatečné překrývání peptidů pro sestavení obou řetězců se 100% pokrytím. Software PEAKS AB automaticky generoval De Bruijnův graf, sestavil sekvenci a odlišil isobarické zbytky Leu/Ile na základě homologie a výskytu v PSM. Sekvence CDR regionů byla určena s vysokou důvěrou a potvrzena závěrečnou manuální kontrolou spekter. Celkový workflow od přípravy vzorku po finální editaci zabral 7–8 dní.
Očekává se další zlepšení kapacity a přesnosti de novo sekvenování díky vyššímu rozlišení hmotnostních analyzátorů a pokročilejším algoritmům strojového učení. Integrace top-down metod a pohyb k multi-omics přístupu může zvýšit robustnost identifikace proteoform. V biotechnologii i farmaceutickém průmyslu se de novo workflow stane standardní součástí validace nových protilátek a kontroly kvality biosimilars.
Popsaný přístup umožnil plné de novo určení sekvence lidské monoklonální IgG1 s 100% přesností, včetně všech CDR a N-terminální modifikace. Kombinace vícenásobných enzymatických štěpení, vysokorozlišovací LC-ESI-QTOF-MS/MS a specializovaného softwaru PEAKS AB představuje efektivní a prakticky využitelnou metodiku pro rutinní sekvenování protilátek.
LC/TOF, LC/HRMS, LC/MS, LC/MS/MS
ZaměřeníKlinická analýza
VýrobceAgilent Technologies, Bruker
Souhrn
Význam tématu
Monoklonální protilátky představují klíčovou třídu bioterapeutik v diagnostice i terapii. Pro jejich vývoj a srovnávací studia biosimilars je nezbytné znát přesnou aminokyselinovou sekvenci celého IgG. V případech, kdy není dostupné cDNA nebo došlo ke ztrátě hybridomové buněčné linie, přijdou ke slovu analytické techniky de novo sekvenování na úrovni proteinu.
Cíle a přehled studie
Cílem studie bylo demonstrovat kompletní de novo určení sekvence lidské monoklonální IgG1 (AF165) bez předchozích znalostí genu. Výzkum kombinoval několik proteolytických štěpení, vysoce rozlišenou LC-ESI-QTOF-MS/MS analýzu a bioinformatické sestavení sekvence v softwaru PEAKS AB 2.0. Klíčovým ukazatelem úspěchu bylo dosažení 100% pokrytí obou lehkého i těžkého řetězce včetně CDR oblastí.
Použitá metodika a instrumentace
Vzorek: 30 µg rekombinantní lidské IgG1
- Štěpení: Trypsin, chymotrypsin, elastáza, pepsin, AspN/LysC, GluC/LysC
- Příprava vzorků: oddeglykozylace PNGase F, denaturace a redukce DTT, alkylace IAA
- Chromatografie: Agilent 1290 Infinity UHPLC; kolona Waters ACQUITY UPLC Peptide CSH C18 (150×2,1 mm, 1,7 µm)
- Eluce: gradient 2–40 % acetonitrilu v 72 min při 40 °C, 200 µL/min
- Hmotnostní spektrometrie: Bruker impact II QTOF s ESI, režim AutoMS/MS top 20, rozsah m/z 150–2200
- Bioinformatika: PEAKS AB 2.0 s tolerancí 10 ppm (MS) a 0,05 Da (MS/MS), modifikace carbamidomethylace, oxidace, deamidace, pyro-Glu
Hlavní výsledky a diskuse
Kombinací šesti enzymatických štěpení bylo získáno dostatečné překrývání peptidů pro sestavení obou řetězců se 100% pokrytím. Software PEAKS AB automaticky generoval De Bruijnův graf, sestavil sekvenci a odlišil isobarické zbytky Leu/Ile na základě homologie a výskytu v PSM. Sekvence CDR regionů byla určena s vysokou důvěrou a potvrzena závěrečnou manuální kontrolou spekter. Celkový workflow od přípravy vzorku po finální editaci zabral 7–8 dní.
Přínosy a praktické využití metody
- Možnost spolehlivého de novo sekvenování monoklonálních protilátek bez genetických informací
- Rychlý a rutinně aplikovatelný protokol v rámci 4–8 dnů
- Automatizace většiny kroků s minimální manuální editací
- Vysoká přesnost určení CDR oblastí a posttranslačních modifikací (pyro-Gln)
Budoucí trendy a možnosti využití
Očekává se další zlepšení kapacity a přesnosti de novo sekvenování díky vyššímu rozlišení hmotnostních analyzátorů a pokročilejším algoritmům strojového učení. Integrace top-down metod a pohyb k multi-omics přístupu může zvýšit robustnost identifikace proteoform. V biotechnologii i farmaceutickém průmyslu se de novo workflow stane standardní součástí validace nových protilátek a kontroly kvality biosimilars.
Závěr
Popsaný přístup umožnil plné de novo určení sekvence lidské monoklonální IgG1 s 100% přesností, včetně všech CDR a N-terminální modifikace. Kombinace vícenásobných enzymatických štěpení, vysokorozlišovací LC-ESI-QTOF-MS/MS a specializovaného softwaru PEAKS AB představuje efektivní a prakticky využitelnou metodiku pro rutinní sekvenování protilátek.
Reference
- Bandeira N, et al. Automated de novo protein sequencing of monoclonal antibodies. Nat Biotechnol. 2008;26(12):1336–8.
- Tran NH, et al. Complete De Novo Assembly of Monoclonal Antibody Sequences. Sci Rep. 2016;6:31730.
Obsah byl automaticky vytvořen z originálního PDF dokumentu pomocí AI a může obsahovat nepřesnosti.
Podobná PDF
Peptide mapping of challenging monoclonal antibodies
2020|Thermo Fisher Scientific|Aplikace
CUSTOMER APPLICATION NOTE 73826 Peptide mapping of challenging monoclonal antibodies Authors: Dan Bach Kristensen1, Trine Meiborg Sloth1, Martin Ørgaard1, Krisztina Radi2 Symphogen, Ballerup, Denmark Thermo Fisher Scientific, Hemel Hempstead, UK 1 2 Keywords: Peptide mapping, monoclonal antibody, mAb, post-translational modifications,…
Klíčová slova
pepsin, pepsintrypsin, trypsinpeptides, peptidesdigest, digestsmart, smartpeptide, peptidelane, lanemapping, mappinghydrophobic, hydrophobicdigestion, digestionisolation, isolationcdr, cdrregions, regionsmicroscans, microscanschallenging
Real-time de novo sequencing of peptide antigens using Bruker ProteoScape™ for 'Run & Done' 4D-immunopeptidomics
2023|Bruker|Postery
ASMS 2023 - THP 378 Real-time de novo sequencing of peptide antigens using Bruker ProteoScape™ for 'Run & Done' 4D-immunopeptidomics A 5000 4500 4000 3500 3000 2500 2000 1500 1000 500 0 1Monash University, Clayton, Australia, 2Rapid Novor Inc., Kitchener,…
Klíčová slova
novor, novorbps, bpsproteoscape, proteoscapenovo, novochymo, chymoelastase, elastasehye, hyealgorithm, algorithmgluc, glucimmunopeptidomics, immunopeptidomicsbruker, brukerpepsin, pepsincorrect, correctreal, realrecall
Application Solutions for Biopharmaceuticals - A Focus on Protein Therapeutics
2012|Waters|Příručky
ApplicAtion SolutionS for BiophArmAceuticAlS A Focus on Protein Therapeutics Introduction: Key Challenges in Biopharmaceutical Characterization .............................................................................................5 7 PROTEIN mass aNalysIs comprehensive and routine characterization of proteins and peptides by lc/mS and lc/mS e ...............................................................9 characterization of an igG1 monoclonal Antibody…
Klíčová slova
uplc, uplcpeptide, peptideprotein, proteinwaters, watersacquity, acquityglycan, glycanantibody, antibodymass, massglycans, glycanspeptides, peptidessystem, systemanalysis, analysismapping, mappingintact, intactbiopharmalynx
Extensive LC-Top-Down MS Sequence Confirmation of the NISTmAb Reference Material 8671
2018|Bruker|Aplikace
Extensive LC-Top-Down MS Sequence Confirmation of the NISTmAb Reference Material 8671 Characterization of therapeutic antibodies aims on primary sequence validation, localization of modifications such as glycan profiles and the determination of disulfide bond status of the target molecule. Introduction Typically,…
Klíčová slova
maldi, maldispoton, spotontds, tdsbruker, brukertof, tofsequence, sequencenistmab, nistmabides, idesterminal, terminaltop, toprapiflex, rapiflexisd, isddown, downanchorchip, anchorchipsdhb