LCMS
Další informace
WebinářeO násKontaktujte násPodmínky užití
LabRulez s.r.o. Všechna práva vyhrazena. Obsah dostupný pod licencí CC BY-SA 4.0 Uveďte původ-Zachovejte licenci.

MS/MS Oligonucleotide Sequencing Using LC/Q-TOF with HILIC Chromatography

Aplikace | 2023 | Agilent TechnologiesInstrumentace
LC/TOF, LC/HRMS, LC/MS, LC/MS/MS
Zaměření
Farmaceutická analýza
Výrobce
Agilent Technologies

Souhrn

Význam tématu


Analýza sekvence oligonukleotidů je zásadní pro vývoj nových léčiv, diagnostiku a kontrolu kvality v biotechnologii. Tradiční iontově párové reverzní fáze poskytují dobrou separaci, ale zanechávají rezidua činidel, která komplikují následné analýzy a prodlužují dobu přípravy systému. Metody založené na HILIC (hydrofilní interakční chromatografie) bez iontových párů s LC/Q-TOF MS nabízejí rychlejší obnovu kolony, čistší prostředí a vysokou kvalitu dat bez potřeby rozsáhlého čištění.

Cíle a přehled studie / článku


Cílem této studie bylo demonstrovat možnost potvrzení sekvence různých typů oligonukleotidů (20- a 30-mer DNA, 21-mer RNA, aptamer a ASO) pomocí HILIC chromatografie spojené s vysokým rozlišením MS/MS na systému Agilent 6545XT LC/Q-TOF. Studie rozšiřuje předchozí práce zaměřené na MS1 charakterizaci a přidává cílenou fragmentaci v MS/MS režimu za účelem dosažení stoprocentní pokrytí sekvence.

Použitá instrumentace


  • Agilent 1290 Infinity II LC systém s vysokorychlostním čerpadlem, autosamplerem s chlazením a multikolonovým termostatem
  • HILIC kolona InfinityLab Poroshell 120 HILIC-Z (2,1 × 50 mm, 2,7 μm)
  • Agilent 6545XT AdvanceBio LC/Q-TOF s dual spray JetStream ESI zdrojem
  • Software Agilent MassHunter Data Acquisition 11.0 a BioConfirm 12.0 pro zpracování dat

Použitá metodika


Oligonukleotidy byly rozpuštěny ve vodě a připraveny v koncentracích 25–100 μM, z nichž se na koloně aplikovalo 25–100 pmol látky. Chromatografické podmínky zahrnovaly gradient mezi mobilní fází A (90 % acetonitrilu, 15 mM octanu amonného) a B (10 % acetonitrilu, 15 mM octanu amonného), průtok 0,4 ml/min, teplotu 30 °C a objem injekce 1 μl. MS/MS analýza v negativním režimu byla provedena v režimu cílené fragmentace (targeted MS/MS), m/z rozsahy 400–3 200 pro MS a 100–3 200 pro MS/MS, rychlost 4 spektra/s pro MS a 1 spektrum/s pro MS/MS. Kolizní energie byly optimalizovány podle prahu m/z 1 500 (12, 15, 18, 20 V pro m/z <1 500; 15, 20, 25, 30 V pro m/z >1 500).

Hlavní výsledky a diskuse


Všechny vzorky vykázaly stabilní retenci mezi 1,5 a 3,5 minuty a bimodální rozložení nábojových stavů. Cílená fragmentace klíčových nábojových stavů zajistila stoprocentní pokrytí sekvence u všech pěti oligonukleotidů:
  • 20-mer DNA: nábojové stavy –4 a –8
  • 30-mer DNA: nábojové stavy –6, –11 a –12
  • ASO (18-mer): nábojový stav –7
  • Aptamer (28-mer): nábojové stavy –10 a –11
  • 21-mer RNA: nábojové stavy –5 a –9
Vyšší nábojové stavy obecně zlepšily pokrytí, ale pro úplný záznam bylo nutné analyzovat i nejhojnější stavy. Optimalizace kolizní energie ukázala, že je účinnější odvozovat nastavení od m/z fragmentů než od délky řetězce.

Přínosy a praktické využití metody


Metoda HILIC LC/Q-TOF MS/MS bez iontových párů snižuje riziko kontaminace systému iontovými páry, zkracuje dobu reekvilibrace kolony a umožňuje vysokou propustnost analýz. Poskytuje spolehlivé potvrzení sekvence oligonukleotidů, což je neocenitelné pro vývoj antisensových léků, aptamerů a dalších modifikovaných nukleotidů v QA/QC procesech a farmaceutické výrobě.

Budoucí trendy a možnosti využití


  • Rozšíření metody na širší škálu chemických modifikací a pevnostních vazeb
  • Integrace s vysokopropustnými platformami (např. RapidFire) pro screeningové aplikace
  • Automatizace a prediktivní optimalizace fragmentačních podmínek s pomocí strojového učení
  • Vývoj jednotných protokolů pro standardizaci analýzy oligonukleotidů v regulovaných laboratořích

Závěr


Studie ukazuje, že HILIC LC/Q-TOF MS/MS bez iontových párů je efektivní a všestranná metoda pro potvrzení sekvence oligonukleotidů. Díky optimalizovaným podmínkám chromatografie a cílené fragmentaci lze v krátkém čase dosáhnout stoprocentního pokrytí sekvence u různě dlouhých a modifikovaných oligonukleotidů.

Reference


  • 1. Rye P.; Schwarzer C. MS1 Oligonucleotide Characterization Using LC/Q-TOF with HILIC. Agilent Technologies application note, publication number 5994-5631EN, 2023.
  • 2. Rye P. High-Throughput, Ion-Pairing-Free, HILIC Analysis of Oligonucleotides Using Agilent RapidFire Coupled to Quadrupole Time-of-Flight Mass Spectrometry. Agilent Technologies application note, publication number 5994-4945EN, 2022.

Obsah byl automaticky vytvořen z originálního PDF dokumentu pomocí AI a může obsahovat nepřesnosti.

PDF verze ke stažení a čtení
 

Podobná PDF

Toggle
Oligonucleotide Characterization by Agilent 1290 Infinity II Bio LC and 6545XT AdvanceBio LC/Q-TOF
Application Note Pharma & Biopharma Oligonucleotides Oligonucleotide Characterization by Agilent 1290 Infinity II Bio LC and 6545XT AdvanceBio LC/Q-TOF Oligonucleotide identity, impurities analysis and sequence determination using BioConfirm 12.0 target plus impurities (TPI) and sequence confirmation workflows Authors Introduction Bian…
Klíčová slova
oligonucleotide, oligonucleotideaso, asosequence, sequencetpi, tpicounts, countsconfirmation, confirmationacquisition, acquisitionoligonucleotides, oligonucleotidesworkflow, workflowcharge, chargeimpurities, impuritiesbioconfirm, bioconfirmmass, massagilent, agilentfluoro
High-throughput, Ion-Pairing-Free, HILIC Analysis of Oligonucleotides Using Agilent RapidFire Coupled to Quadrupole Time-of-Flight Mass Spectrometry
Application Note High-throughput, Ion-Pairing-Free, HILIC Analysis of Oligonucleotides Using Agilent RapidFire Coupled to Quadrupole Time-of-Flight Mass Spectrometry Author Abstract Peter Rye, PhD Agilent Technologies, Inc. This application note describes a high-throughput, ion-pairing-free method for oligonucleotide characterization using the Agilent RapidFire…
Klíčová slova
oligo, oligorapidfire, rapidfirecounts, countshilic, hilicoligos, oligosdeconvoluted, deconvolutedcharge, chargeamu, amumass, massdepurination, depurinationpredominant, predominantiprp, iprpwere, weredeconvolution, deconvolutionheights
Oligonucleotide Mass Confirmation and Impurity Identification
Application Note Biopharma Oligonucleotide Mass Confirmation and Impurity Identification Using Agilent InfinityLab LC/MSD XT and Agilent OpenLab CDS Author Bian Yulan Agilent Technologies, Inc. Abstract This application note highlights the use of the Agilent InfinityLab LC/MSD XT system on molecular…
Klíčová slova
ttt, tttmass, masscdna, cdnadeconvolution, deconvolutionmsd, msdaptamer, aptamercloning, cloningflp, flpprimer, primerinfinitylab, infinitylabcharge, chargeoligo, oligothreshold, thresholdspectrum, spectrumoligonucleotide
MS1 Oligonucleotide Characterization Using LC/Q‑TOF with HILIC Chromatography
Application Note BioPharma MS1 Oligonucleotide Characterization Using LC/Q-TOF with HILIC Chromatography Authors Introduction Peter Rye and Cody Schwarzer Agilent Technologies, Inc. The synthesis of RNA and DNA oligonucleotides (oligos) is an iterative process that, despite highly optimized chemistry, results in…
Klíčová slova
counts, countssirna, sirnadeconvoluted, deconvolutedoligos, oligosamu, amumass, masscharge, chargeoligo, oligohilic, hilicribose, riboseimpurities, impuritiesduplex, duplexwide, widedepur, depurtime
Další projekty
GCMS
ICPMS
Sledujte nás
Další informace
WebinářeO násKontaktujte násPodmínky užití
LabRulez s.r.o. Všechna práva vyhrazena. Obsah dostupný pod licencí CC BY-SA 4.0 Uveďte původ-Zachovejte licenci.