Oligonucleotide sequencing by LC-MS/MS
Prezentace | 2022 | Thermo Fisher Scientific | ISCInstrumentace
Charakterizace oligonukleotidů pomocí LC-MS/MS představuje klíčovou metodu pro kontrolu kvality mRNA vakcín a bioterapeutik. Rychlá a spolehlivá sekvenační analýza mRNA je zásadní pro ověření správné sekvence, detekci možných modifikací a zajištění konzistence výroby. Díky vysoké přesnosti hmotnostní spektrometrie lze získat detailní informace o fragmentaci a sekundární struktuře molekuly, což významně přispívá k bezpečnosti a účinnosti mRNA léčiv.
Cílem této studie je představit novou metodiku LC-MS/MS pro detailní sekvenování oligonukleotidů až do délky 60 a více nukleotidů. Autoři demonstrují optimalizaci chromatografických a hmotnostně spektrometrických podmínek, včetně volby ion-pair činidel (HFIP/TEA), nastavení pH a řízené fragmentace (HCD) s krokovanou kolizní energií. Zvláštní pozornost je věnována parciálnímu štěpení mRNA pomocí RNázy T1 v mobilizované podobě, které zajišťuje reprodukovatelné a analyticky výhodné štěpné vzory.
Vzorek mRNA je nejprve parciálně digesován pomocí RNázy T1 navázané na magnetické kuličky. Takto řízené štěpení umožňuje získat fragmenty v rozsahu 10–60 nukleotidů, vhodné pro sekvenační analýzu. Chromatografická separace probíhá na RP UHPLC kolónách s ion-pair mobilní fází obsahující triethylamin (TEA) a hexafluoroisopropanol (HFIP). Koncentrace HFIP je optimalizována (20–80 mM) pro zlepšení retence a zúžení nábohových stavových rozdělení. Detekce a fragmentace probíhají na Orbitrap Exploris v negativním módu s rozlišením až 240 000 a krokovanou NCE (10–24), čímž se dosahuje vysokého pokrytí sekvence.
Optimalizované koncentrace HFIP a TEA vedou k vyrovnanějšímu nábohovému rozdělení a lepší retenci fragmentů. Krokovaná HCD fragmentace umožňuje dosáhnout ASR (Average Structural Resolution) blízko hodnoty 1, zejména u vyšších nábojových stavů, čímž se zvyšuje sekvenační pokrytí až do velikosti 60 a více nukleotidů. Parciální štěpení pomocí RNázy T1 na magnetických kuličkách prokazuje vysokou reprodukovatelnost fragmentačního vzoru a minimalizuje kontaminaci analytického systému. Metoda rovněž rozlišuje sekvenční izomery a detekuje známé modifikace.
Další vývoj může zahrnovat automatizaci přípravy vzorků, zrychlení chromatografických postupů a rozšíření softwarové podpory pro analýzu více typů enzymatických štěpení. Integrace metody do výrobních linek mRNA vakcín umožní on-line monitoring kvality a rychlejší detekci variant. Rozvoj nových ion-pair činidel a vylepšeného hardwaru může zvýšit citlivost a rozsah analyzovaných fragmentů.
Navržená LC-MS/MS metoda kombinující parciální štěpení RNázy T1, optimalizované ion-pair chromatografii a krokovanou HCD fragmentaci poskytuje spolehlivé a detailní sekvenační údaje pro mRNA vakcíny a bioterapeutika. Díky vysoké reprodukovatelnosti, schopnosti detekovat izomery i modifikace a rutinnímu průběhu analýzy (cca 60 minut) je metoda vhodná pro aplikace QA/QC a výzkumné účely.
Vanhinsbergh C., et al. Characterization and Sequence Mapping of Large RNA and mRNA Therapeutics Using Mass Spectrometry. Anal. Chem. 2022, 94, 20, 7339–7349.
LC/HRMS, LC/MS, LC/MS/MS, LC/Orbitrap
ZaměřeníFarmaceutická analýza
VýrobceThermo Fisher Scientific
Souhrn
Význam tématu
Charakterizace oligonukleotidů pomocí LC-MS/MS představuje klíčovou metodu pro kontrolu kvality mRNA vakcín a bioterapeutik. Rychlá a spolehlivá sekvenační analýza mRNA je zásadní pro ověření správné sekvence, detekci možných modifikací a zajištění konzistence výroby. Díky vysoké přesnosti hmotnostní spektrometrie lze získat detailní informace o fragmentaci a sekundární struktuře molekuly, což významně přispívá k bezpečnosti a účinnosti mRNA léčiv.
Cíle a přehled studie / článku
Cílem této studie je představit novou metodiku LC-MS/MS pro detailní sekvenování oligonukleotidů až do délky 60 a více nukleotidů. Autoři demonstrují optimalizaci chromatografických a hmotnostně spektrometrických podmínek, včetně volby ion-pair činidel (HFIP/TEA), nastavení pH a řízené fragmentace (HCD) s krokovanou kolizní energií. Zvláštní pozornost je věnována parciálnímu štěpení mRNA pomocí RNázy T1 v mobilizované podobě, které zajišťuje reprodukovatelné a analyticky výhodné štěpné vzory.
Použitá metodika
Vzorek mRNA je nejprve parciálně digesován pomocí RNázy T1 navázané na magnetické kuličky. Takto řízené štěpení umožňuje získat fragmenty v rozsahu 10–60 nukleotidů, vhodné pro sekvenační analýzu. Chromatografická separace probíhá na RP UHPLC kolónách s ion-pair mobilní fází obsahující triethylamin (TEA) a hexafluoroisopropanol (HFIP). Koncentrace HFIP je optimalizována (20–80 mM) pro zlepšení retence a zúžení nábohových stavových rozdělení. Detekce a fragmentace probíhají na Orbitrap Exploris v negativním módu s rozlišením až 240 000 a krokovanou NCE (10–24), čímž se dosahuje vysokého pokrytí sekvence.
Použitá instrumentace
- Thermo Scientific SMART Digest RNase T1 magnetic beads
- Thermo Scientific DNAPac RP UHPLC columns
- Thermo Scientific Vanquish UHPLC System
- Thermo Scientific Orbitrap Exploris Mass Spectrometer
- Softwary Thermo Scientific BioPharma Finder 5.1 a Chromeleon 7.3
Hlavní výsledky a diskuse
Optimalizované koncentrace HFIP a TEA vedou k vyrovnanějšímu nábohovému rozdělení a lepší retenci fragmentů. Krokovaná HCD fragmentace umožňuje dosáhnout ASR (Average Structural Resolution) blízko hodnoty 1, zejména u vyšších nábojových stavů, čímž se zvyšuje sekvenační pokrytí až do velikosti 60 a více nukleotidů. Parciální štěpení pomocí RNázy T1 na magnetických kuličkách prokazuje vysokou reprodukovatelnost fragmentačního vzoru a minimalizuje kontaminaci analytického systému. Metoda rovněž rozlišuje sekvenční izomery a detekuje známé modifikace.
Přínosy a praktické využití metody
- Rychlá a přesná verifikace primární sekvence mRNA vakcín.
- Kvalitativní a kvantitativní kontrola fragmentačního vzoru jako QC test.
- Možnost sledování strukturních vlastností mRNA (sekundární struktura).
- Jednoduché škálování pro rutinní laboratorní workflow.
Budoucí trendy a možnosti využití
Další vývoj může zahrnovat automatizaci přípravy vzorků, zrychlení chromatografických postupů a rozšíření softwarové podpory pro analýzu více typů enzymatických štěpení. Integrace metody do výrobních linek mRNA vakcín umožní on-line monitoring kvality a rychlejší detekci variant. Rozvoj nových ion-pair činidel a vylepšeného hardwaru může zvýšit citlivost a rozsah analyzovaných fragmentů.
Závěr
Navržená LC-MS/MS metoda kombinující parciální štěpení RNázy T1, optimalizované ion-pair chromatografii a krokovanou HCD fragmentaci poskytuje spolehlivé a detailní sekvenační údaje pro mRNA vakcíny a bioterapeutika. Díky vysoké reprodukovatelnosti, schopnosti detekovat izomery i modifikace a rutinnímu průběhu analýzy (cca 60 minut) je metoda vhodná pro aplikace QA/QC a výzkumné účely.
Reference
Vanhinsbergh C., et al. Characterization and Sequence Mapping of Large RNA and mRNA Therapeutics Using Mass Spectrometry. Anal. Chem. 2022, 94, 20, 7339–7349.
Obsah byl automaticky vytvořen z originálního PDF dokumentu pomocí AI a může obsahovat nepřesnosti.
Podobná PDF
mRNA direct sequence mapping using automated partial digestion with magnetic nuclease and LC-HRMS
2022|Thermo Fisher Scientific|Aplikace
Customer application note | 000723 Biotechnology mRNA direct sequence mapping using automated partial digestion with magnetic nuclease and LC-HRMS Authors Application benefits Mark Dickman1, Christina Vanhinsbergh1, Jon Bardsley , Ken Cook , Andrew 2 2 Williamson2, Jennifer Sutton3, Keeley Murphy3…
Klíčová slova
mrna, mrnasequence, sequenceegfp, egfptimeretention, timeretentionintensity, intensitydigestion, digestionrelative, relativerna, rnafragments, fragmentsunmodified, unmodifiedmapping, mappingpartial, partialoligoribonucleotide, oligoribonucleotideoligoribonucleotides, oligoribonucleotidesmodified
High-throughput LC/MS characterization of mRNA therapeutics using a fast DDA method on the Orbitrap Astral MS
2024|Thermo Fisher Scientific|Postery
High-throughput LC/MS characterization of mRNA therapeutics using a fast DDA method on the Orbitrap Astral MS Tabiwang Arrey1; Angela Criscuolo1; Matthew James Garland1, Bernd Hagedorn1, Keeley Murphy2; Eugen Damoc1, 1Thermo Fisher Scientific, Bremen, Germany; 2Thermo Fisher Scientific, San Jose, CA…
Klíčová slova
astral, astralorbitrap, orbitrapmrna, mrnadiversity, diversitysequence, sequencestepped, steppedvalue, valueoutliers, outliersdigestion, digestionenergy, energyscan, scanfragment, fragmentallowed, allowedthermo, thermoagc
Myth busting: “You cannot sequence oligonucleotides over 20 to 30 nucleotides long by LCMS/MS” Learn how to routinely sequence 100 nt oligonucleotides
2023|Thermo Fisher Scientific|Postery
Myth busting: “You cannot sequence oligonucleotides over 20 to 30 nucleotides long by LCMS/MS” Learn how to routinely sequence 100 nt oligonucleotides Alexander Schwahn1, Ulrik Mistarz2, Keeley Murphy3, and Ken Cook4; Thermo Fisher Scientific: 1) Reinach, Switzerland; 2) Copenhagen, Denmark;…
Klíčová slova
oligonucleotides, oligonucleotidessequence, sequencesequencing, sequencingtherapeutics, therapeuticsfragmentation, fragmentationmrna, mrnalarge, largestates, statesoligonucleotide, oligonucleotidelong, longexploris, explorispromote, promotefinder, findercharge, chargewhich
Oligonucleotide mapping using BioPharma Finder software
2020|Thermo Fisher Scientific|Aplikace
APPLICATION NOTE 73789 Oligonucleotide mapping using BioPharma Finder software Authors: Haichuan Liu1, Kevin Guo2, Jennifer Sutton1, Min Du2 Thermo Fisher Scientific, San Jose, CA Thermo Fisher Scientific, Boston, MA 1 2 Keywords: Oligonucleotide, DNA, RNA, data dependent acquisition, tandem mass…
Klíčová slova
pgd, pgdpad, padptd, ptdpcd, pcdptdpcd, ptdpcdoligonucleotides, oligonucleotidesoligonucleotide, oligonucleotidestepped, steppedpgr, pgrfinder, finderpur, purbiopharma, biopharmance, ncerelative, relativeintensity