TECHNIKY METABOLOMIKY V BIOMEDICÍNĚ
Vědecké články | 2013 | Chemické listyInstrumentace
Metabolomika umožňuje komplexně zachytit aktuální stav nízkomolekulárních látek v biologických vzorcích. Na rozdíl od genomiky či proteomiky odráží metabolomika dynamické změny metabolismu, které jsou bezprostředním odrazem fyziologického stavu organismu. Díky tomu má zásadní význam pro biomedicínu, kde nachází uplatnění při objevování biomarkerů, diagnostice onemocnění a sledování farmakodynamiky léčiv.
Tento článek představuje ucelený přehled kroků metabolomického experimentu se zaměřením na biomedicínské aplikace. Popisuje výběr a přípravu vzorků, hlavní separační techniky, integraci s hmotnostní spektrometrií i základní principy zpracování a statistické analýzy dat. Článek také ukazuje příklady klinických studií využívajících GC×GC, LC-MS či CE-MS.
Metabolomické postupy lze rozdělit na cílené (targeted) a necílené (untargeted) analýzy. Necílené přístupy se opírají o vysoce rozlišovací MS (TOF, Orbitrap, FT-ICR) a identifikují nové biomarkery onemocnění, např. pro diabetes, rakovinu či dědičné metabolické vady. Cílené metody s QqQ v módu MRM poskytují kvantitativní data o známých metabolitech. Důležitá je robustní příprava vzorků a standardizace protokolů (MSI iniciativy).
Očekává se další zvyšování citlivosti a rozlišovací schopnosti MS, širší nasazení dvourozměrných technik (GC×GC, 2D-LC), integrace s dalšími „omik“ daty (proteomika, transkriptomika) a rozvoj standardů pro výměnu dat. Významnou roli budou hrát open-source softwary, databáze a umělá inteligence pro automatizovanou interpretaci rozsáhlých datových souborů.
Metabolomika se etablovala jako klíčový nástroj systémové biologie a biomedicínského výzkumu. Díky rozmanitým analytickým platformám a pokročilým statistickým metodám umožňuje hluboký vhled do metabolických procesů v normě i nemoci. Její další rozvoj povede k rychlejší diagnostice, lepší personalizaci terapie a novým poznatkům o biochemických drahách.
GC, GCxGC, GC/MSD, Příprava vzorků, HPLC, LC/TOF, LC/HRMS, LC/MS, LC/MS/MS, LC/Orbitrap, LC/QQQ, LC/SQ, LC/QTRAP, Kapilární elektroforéza
ZaměřeníMetabolomika
VýrobceSouhrn
Význam tématu
Metabolomika umožňuje komplexně zachytit aktuální stav nízkomolekulárních látek v biologických vzorcích. Na rozdíl od genomiky či proteomiky odráží metabolomika dynamické změny metabolismu, které jsou bezprostředním odrazem fyziologického stavu organismu. Díky tomu má zásadní význam pro biomedicínu, kde nachází uplatnění při objevování biomarkerů, diagnostice onemocnění a sledování farmakodynamiky léčiv.
Cíle a přehled studie / článku
Tento článek představuje ucelený přehled kroků metabolomického experimentu se zaměřením na biomedicínské aplikace. Popisuje výběr a přípravu vzorků, hlavní separační techniky, integraci s hmotnostní spektrometrií i základní principy zpracování a statistické analýzy dat. Článek také ukazuje příklady klinických studií využívajících GC×GC, LC-MS či CE-MS.
Použitá metodika a instrumentace
- Příprava vzorků: metabolické zhášení buněk (quenching), extrakce methanolem či chloroform-methanol směsí
- Separační techniky: GC, GC×GC, HPLC (RP, NP, HILIC), UHPLC, CE
- Detekce a identifikace: MS (Q, QqQ, IT, TOF, Orbitrap, FT-ICR), ESI, APCI, APPI, NMR
- Datové zpracování: baseline correction, peak picking, alignment, normalizace, transformace
- Statistické metody: PCA, PLS-DA, OPLS-DA, shluková analýza, rozhodovací stromy, neuronové sítě
Hlavní výsledky a diskuse
Metabolomické postupy lze rozdělit na cílené (targeted) a necílené (untargeted) analýzy. Necílené přístupy se opírají o vysoce rozlišovací MS (TOF, Orbitrap, FT-ICR) a identifikují nové biomarkery onemocnění, např. pro diabetes, rakovinu či dědičné metabolické vady. Cílené metody s QqQ v módu MRM poskytují kvantitativní data o známých metabolitech. Důležitá je robustní příprava vzorků a standardizace protokolů (MSI iniciativy).
Přínosy a praktické využití metody
- Objevování nových biomarkerů a diagnostických panelů (onkologie, kardiologie, dědičné vady)
- Monitorování léčebných zásahů a farmakometabolomika
- Studium buněčných drah a toxikologie
- Personalizovaná medicína: sledování metabolických profilů pacientů
Budoucí trendy a možnosti využití
Očekává se další zvyšování citlivosti a rozlišovací schopnosti MS, širší nasazení dvourozměrných technik (GC×GC, 2D-LC), integrace s dalšími „omik“ daty (proteomika, transkriptomika) a rozvoj standardů pro výměnu dat. Významnou roli budou hrát open-source softwary, databáze a umělá inteligence pro automatizovanou interpretaci rozsáhlých datových souborů.
Závěr
Metabolomika se etablovala jako klíčový nástroj systémové biologie a biomedicínského výzkumu. Díky rozmanitým analytickým platformám a pokročilým statistickým metodám umožňuje hluboký vhled do metabolických procesů v normě i nemoci. Její další rozvoj povede k rychlejší diagnostice, lepší personalizaci terapie a novým poznatkům o biochemických drahách.
Reference
- Goodacre R.: J. Nutr. 137, 259S (2007).
- Dunn W. B., Bailey N. J. C., Johnson H. E.: Analyst 130, 606 (2005).
- Fiehn O. et al.: Metabolomics 3, 157 (2007).
- Sumner L. W. et al.: Metabolomics 3, 211 (2007).
- Goodacre R. et al.: Metabolomics 3, 231 (2007).
- Sansone S. A. et al.: Metabolomics 3, 249 (2007).
- Hardy N. W., Taylor C. F.: Metabolomics 3, 243 (2007).
- Dettmer K., Aronov P. A., Hammock B. D.: Mass Spectrom. Rev. 26, 51 (2007).
- Lorenz M. A. et al.: Anal. Chem. 83, 3406 (2011).
- Teng Q. et al.: Metabolomics 5, 199 (2008).
- Villas-Boas S. G., Bruheim P.: Anal. Biochem. 370, 87 (2007).
- Dettmer K. et al.: Anal. Bioanal. Chem. 399, 1127 (2011).
- Sellick C. A. et al.: Metabolomics 6, 427 (2010).
- Villas-Bôas S. G. et al.: Mass Spectrom. Rev. 24, 613 (2005).
- Musilová J., Glatz Z.: Chem. Listy 105, 745 (2011).
- Jennings W., Mittlefehldt E., Stremple P.: Modern Practice of Gas Chromatography. Academic Press 1997.
- Grob R. L., Barry E. F. (ed.): Modern Practice of Gas Chromatography. J. Wiley 2004.
- Sparkman O. D. et al.: Gas Chromatography and Mass Spectrometry. Academic Press 2011.
- Gu S. H. et al.: Biomed. Chrom. 24, 245 (2010).
- Kvitvang H. F. et al.: Anal. Chem. 83, 2705 (2011).
- Zoerner A. A. et al.: J. Chromatogr., B 877, 2909 (2009).
- Trettin A. et al.: J. Chromatogr., B 879, 2274 (2011).
- Hansen M. et al.: Anal. Bioanal. Chem. 400, 3409 (2011).
- Emidio E. S. et al.: Anal. Chim. Acta 670, 63 (2010).
- Gorecki T. et al.: J. Sep. Sci. 27, 359 (2004).
- Mondello L. et al.: Mass Spectrom. Rev. 27, 101 (2008).
- Adahchour M. et al.: Trends Anal. Chem. 25, 438 (2006).
- Adahchour M. et al.: Trends Anal. Chem. 25, 540 (2006).
- Adahchour M. et al.: J. Chromatogr., A 1186, 67 (2008).
- Mitrevski B. S. et al.: J. Chromatogr., A 1214, 134 (2008).
- Li X. et al.: Anal. Chim. Acta 633, 257 (2009).
- Pasikanti K. K. et al.: Anal. Bioanal. Chem. 398, 12853 (2010).
- Oresic M. et al.: Genome Med. 3, 19 (2011).
- Kouremenos K. A. et al.: J. Chromatogr., A 1217, 104 (2010).
- Wojtowicz P. et al.: J. Chromatogr., A 1217, 8054 (2010).
- Lehmann R. et al.: PloS One 5, e11519 (2010).
- Cubbon S. et al.: Anal. Chem. 79, 8911 (2007).
- Lewis G. D. et al.: J. Clin. Invest. 118, 3503 (2008).
- Ma Y. L. et al.: Dig. Dis. Sci. 54, 2655 (2009).
- Juo C. G. et al.: Biofactors 34, 159 (2008).
- Zhou B. et al.: Mol. Biosyst. 8, 470 (2012).
- Roux A. et al.: Clin. Biochem. 44, 119 (2011).
- Becker S. et al.: J. Chromatogr., B 883–884, 68 (2012).
- Ceglarek U. et al.: Clin. Chim. Acta 401, 114 (2009).
- Wang Z. et al.: Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 29, 1383 (2009).
- Chen J. et al.: J. Proteome Res. 10, 2625 (2011).
- Kim K. et al.: Mol. Cell. Proteomics 8, 558 (2009).
- Liu G. W. et al.: Anal. Chem. 81, 9225 (2009).
- Wikoff W. R. et al.: Clin. Chem. 53, 2169 (2007).
- Ritchie S. A. et al.: BMC Med. 8 (2010).
- Janeckova H. et al.: J. Chromatogr., A 1226, 11 (2012).
- Jansson J. et al.: PloS One 4, e6386 (2009).
- Turer A. T. et al.: Circulation 119, 1736 (2009).
- Klampfl C. W.: Electrophoresis 27, 3 (2006).
- Ramautar R. et al.: Electrophoresis 31, 2319 (2010).
- Ramautar R. et al.: Electrophoresis 32, 52 (2011).
- Goodacre R. et al.: Metabolomics 3, 231 (2007).
- Trygg J. et al.: J. Proteome Res. 6, 469 (2007).
- Boccard J. et al.: J. Sep. Sci. 33, 290 (2010).
- Smilde A. K. et al.: Metabolomics 6, 3 (2010).
- Moon J. Y. et al.: J. Am. Soc. Mass Spectrom. 20, 1626 (2009).
- Keseler I. M. et al.: Nucleic Acids Res. 37, D464 (2009).
- Caspi R. et al.: Nucleic Acids Res. 38, D473 (2010).
- Kanehisa M. et al.: Nucleic Acids Res. 38, D335 (2010).
- Wishart D. S. et al.: Nucleic Acids Res. 38, D603 (2010).
- Croft D. et al.: Nucleic Acids Res. 39, D691 (2011).
- Karp P. D. et al.: Nucleic Acids Res. 33, 6083 (2005).
- Wojtowicz P., Dostálová E., Adam T.: Klin. Biochem. Metab. 20, 38 (2012).
- Wojtowicz P. et al.: Gas Chromatography - Biochemicals, Narcotics and Essential Oils (Salih B., ed.), kap. 2, 42, 46. InTech, Rijeka 2012.
Podobná PDF
SOUČASNÝ VÝVOJ V PROTEOMICE
2004||Vědecké články
Chem. Listy 98, 1112 − 1118 (2004) Referáty SOUČASNÝ VÝVOJ V PROTEOMICE které jsou genomem v průběhu života buňky exprimovány a následně modifikovány. Termín se rovněž používá v méně obecném smyslu pro vyjádření proteinového složení organismu, orgánu, tkáně nebo tělesné…
Klíčová slova
referáty, referátyproteinů, proteinůproteomika, proteomikaidentifikaci, identifikaciproteomiky, proteomikyproteinu, proteinumůže, můžebýt, býtgenomem, genomemčipů, čipůobou, oboupři, přiimobilizovanými, imobilizovanýmiproteomickou, proteomickoumohou
ANALYTICKÉ METODY STUDIA CYTOKININŮ
2004||Vědecké články
Chem. Listy 98, 834 − 841 (2004) Referáty ANALYTICKÉ METODY STUDIA CYTOKININŮ glukosidy jsou produkty deaktivačních metabolických drah. Volné báze a ribosidy vykazují vysokou biologickou aktivitu. Ostatní deriváty jsou buď zcela neúčinné (N-glukosidy) nebo dočasně neúčinné (O-glukosidy). Strukturní vzorce nejdůležitějších…
Klíčová slova
referáty, referátyglukosid, glukosidcytokininů, cytokininůzeatin, zeatinmetody, metodyjsou, jsousledování, sledovánícytokininových, cytokininovýchtopolin, topolintzr, tzrzeatinribosid, zeatinribosidpři, přihmotnostní, hmotnostníimunochemické, imunochemicképroti
LZE VYUŽÍT METABOLOMICKÉ PROFILOVÁNÍ PRO AUTENTICITU GENETICKY MODIFIKOVANÉ SÓJI?
2014|Thermo Fisher Scientific|Vědecké články
Chem. Listy 108, 875881(2014) Laboratorní přístroje a postupy LABORATORNÍ PŘÍSTROJE A POSTUPY LZE VYUŽÍT METABOLOMICKÉ PROFILOVÁNÍ PRO AUTENTICITU GENETICKY MODIFIKOVANÉ SÓJI? tak rostlina odumírá na nedostatek těchto aminokyselin. Do GM sóji byla vložena jiná varianta genu pro EPSP syntasu pocházející…
Klíčová slova
sóji, sójipro, protransgenní, transgennílaboratorní, laboratornípostupy, postupypřístroje, přístrojedart, dartzískaných, získanýchdat, datgeneticky, genetickykonvenční, konvenčníodlišení, odlišeníkyselina, kyselinatechniky, technikymodifikované
RYCHLÉ CHROMATOGRAFICKÉ SEPARACE
2019|Waters|Vědecké články
Chem. Listy 113, 407–414(2019) Referát RYCHLÉ CHROMATOGRAFICKÉ SEPARACE LUCIE BOROVCOVÁ, VLADIMÍR HAVLÍČEK a KAREL LEMR s technikami konvenčními. Mezi tyto techniky, dnes již běžně používané, řadíme ultra-vysokoúčinnou kapalinou chromatografii (UHPLC), která pro zvýšení účinnosti separace může využívat stacionární fáze s…
Klíčová slova
separací, separacíreferát, referátpři, přiuhpsfc, uhpsfcseparace, separacerychlých, rychlýchrychlé, rychléchromatografie, chromatografiechromatografických, chromatografickýchčástic, částicuhplc, uhplcčastěji, častějichromatografické, chromatografickéstacionárních, stacionárníchnachází